MultiNAを使った電気泳動

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=MultiNAを使った電気泳動=
 
=MultiNAを使った電気泳動=
  
==分離バッファー、マーカー、ラダーの組み合わせ==
+
==試薬==
{|
+
{| class='wikitable'
 +
|MultiNA用試薬||ラダー
 
|-
 
|-
|DNA-500
+
|DNA-500||25bp DNA ラダー
|25bp DNA ladder
+
|-
 +
|DNA-12000||2-Log DNA Ladder (0.1-10.0 kbp)
 
|}
 
|}
==用意するもの==
 
分離バッファー (separation buffer)
 
マーカー
 
ラダー
 
SYBR GREEN(?)
 
  
毎回準備しなくてよいもの
+
*SYBR Gold
希釈色素液
+
SYBR GoldをTEで100倍に希釈する。
+
ラダー
+
TEで50倍希釈する
+
  
毎回準備するもの
+
==ストック溶液の作成==
希釈色素液を分離バッファーで100倍に希釈する。
+
* 希釈色素液
水を補給する。
+
# SYBR Gold 1µlとTE 99µlを混ぜ合わせる
 +
# -20℃で保存する。
 +
* ラダーを希釈する (希釈したラダーは-20℃で保存する)
 +
# 25bp DNA ラダーはTEで50倍に希釈する。
 +
# 2-Log DNA LadderはTEで100倍に希釈する。
 +
 
 +
==使用時に調整するもの==
 +
* 希釈色素液を分離バッファーで100倍に希釈する。必要量はサンプルを設定した後計算されるが、以下を参考に調整してもよい。
 +
{| class='wikitable'
 +
|合計分析数||8分析以下||9-29分析||30-79分析||80-120分析
 +
|-
 +
|分離バッファーの量 (µl)||495||990||1980||2970
 +
|-
 +
|希釈色素液の量 (µl)||5||10||20||30
 +
|}
 +
* 洗浄水の量を確認する。足りないときはミリQ水を補充する。
  
使用方法
+
==使用方法==
  
 
前日使用していないときは全チップクリーニングをする。
 
前日使用していないときは全チップクリーニングをする。

2016年4月13日 (水) 15:58時点における版

目次

MultiNAを使った電気泳動

試薬

MultiNA用試薬 ラダー
DNA-500 25bp DNA ラダー
DNA-12000 2-Log DNA Ladder (0.1-10.0 kbp)
  • SYBR Gold

ストック溶液の作成

  • 希釈色素液
  1. SYBR Gold 1µlとTE 99µlを混ぜ合わせる
  2. -20℃で保存する。
  • ラダーを希釈する (希釈したラダーは-20℃で保存する)
  1. 25bp DNA ラダーはTEで50倍に希釈する。
  2. 2-Log DNA LadderはTEで100倍に希釈する。

使用時に調整するもの

  • 希釈色素液を分離バッファーで100倍に希釈する。必要量はサンプルを設定した後計算されるが、以下を参考に調整してもよい。
合計分析数 8分析以下 9-29分析 30-79分析 80-120分析
分離バッファーの量 (µl) 495 990 1980 2970
希釈色素液の量 (µl) 5 10 20 30
  • 洗浄水の量を確認する。足りないときはミリQ水を補充する。

使用方法

前日使用していないときは全チップクリーニングをする。 一日の最初にチップ洗浄を行う(2回)。

MultiNA装置制御を起動する。 サンプルの登録を行う。 必要な分離バッファーとマーカーの量が表示されるので、分離バッファーは専用のチューブに、マーカーは0.5mlチューブに分注して、所定の位置に設置する。分離バッファーとマーカーのラベルの色と装置内の置き場所の色が同じ。 自分のサンプルをセットする。サンプルは5µl以上必要で、そのうち1µlが使用される。 ラダーもセットする。ラダーは10µl程度セットする。 サンプルを固定するための金属の網をかぶせる。 蓋をする。 制御用ソフトでランを開始する。泳動終了後に自動で洗浄を2回行うようにしておく。

一日の最後に全チップクリーニングを行う。チップクリーニングを行ったまま帰宅してよい。

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案内
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