ゲノム編集した植物のシークエンスの解析

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* CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説
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::* ゲノム編集の概要・変異アリルの検出方法(genotyping)については、「 [[シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定]]」を参照
  
CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異を同定する方法。
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====[1] キャピラリーシーケンスを行い、 解析に使うデータ(ファイル)を準備する====
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:::※ 詳細は、「 [[シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定]]」の '''[4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)'''を参照
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* キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
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::* ゲノム編集した箇所をはさんだ領域をPCRで増幅したものを、両側のプライマー(センス、アンチセンス)でシークエンス解析したファイル
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* ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報
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* sgRNA配列の情報
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<P>
  
T2世代で変異アリルをもつものを選抜する
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====[2] 「仮想実験室:Mitsucal」を用いてデータを解析する====
(Cas9を持たないものを選抜。pKIベクターを用いた場合、OLE-RFPが光らない種子)
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* 「仮想実験室:Mitsucal」のツール「波形分離(重なった波形を分離する)」を用いて解析を行う。
(genotyping:PCR+制限酵素処理で、切れないバンドを持つ個体を選抜)
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::# 「仮想実験室:Mitsucal」のサイトへ移動 https://mitsucal.tsbio.info/vl/  <BR>
上記のPCR産物を、PCRに用いたプライマー各々でキャピラリーシークエンスを行う。
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::# "やること"のプルダウンから「重なった波形を分離する」を選択 <BR>
この時に、シークエンスを解析し、変異を同定する方法。
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::# "参照配列" に"遺伝子のもとの配列"をコピー&ペーストし、波形ファイル(拡張子.ab1)を送信して、「Start」
 
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1) 解析に使うファイルを準備する
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* キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
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* ゲノム編集した遺伝子のもとの配列とsgRNAの配列。FASTA形式で保存する
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2) シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を起動
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*「ATGC」は共通PCにインストールしてあります
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{| class="wikitable mw-collapsible mw-collapsed" data-expandtext="開く" data-collapsetext="閉じる"
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* 「波形分離」ツールの使い方の解説は、鈴木研究室のホームページの記事を参照 http://biochemistry.isc.chubu.ac.jp/labo/suzuki/archives/812
!自分のPCで解析したい場合
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:* [A] 波形が途中から二重に重なっている場合:Bi-allelic(2個のアリルを検出)
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:* [B] 波形が最後まで1種類の場合:ホモ(アリルは1個)
|'''インストール方法''':中部大学総合情報センターから「Genetyx」をダウンロード・インストールして使用する<BR>
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http://www.isc.chubu.ac.jp/services/chubu/genetyx.html
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* 上記ページへのアクセス、および「Genetyx」のダウンロード・インストールは中部大学内のネットワークへの接続が必要
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|'''起動方法''':「ATGC」は遺伝情報処理ソフトウェア「Genetyx」内にあるので、以下のいずれかの方法で起動する
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* (A) 「Genetyx」を起動し、ツールバーの「起動」-「ATGC」を選択
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* (B) 各自のPCの「C:ドライブ」-「Program Files」-「Genetyx_VerXX_Net」フォルダ内の「ATGC.exe」を起動
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** (A)の方法で起動する場合は、PCが中部大学内のネットワークに接続されている必要がある
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|'''初期設定''':「ATGC」は初回使用時にパラメータを設定する必要がある(共通PCは設定済み)
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*「ファイル」-「環境設定」-「解析」を選択し
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**最小ホモロジースコア「30」
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**最小一致塩基数「10」<BR>
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に変更する
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|}
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3)・キャピラリーシークエンスのファイル(拡張子.ab1のファイル)
 
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'''これ以降は編集途中の産物'''
  
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!マイ || ヘッダ
 
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| A || B
 
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| C || D
 
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{| class="wikitable mw-collapsible mw-collapsed" data-expandtext="開く" data-collapsetext="閉じる"
 
!マイ
 
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| A
 
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| C
 
|}
 
  
<div class="mw-collapsible mw-collapsed" style="width:100%">
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[[ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合]]
このテキストは折り畳み可能ではありません。しかし次のテキストはデフォルトで折り畳み可能で隠蔽されています:
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<div class="mw-collapsible-content">このテキストはデフォルトで隠蔽されているはずです。</div>
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同様にこのテキストは可視化されているはずです。
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</div>
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2022年1月13日 (木) 14:14時点における最新版

(注意:編集中!) 

  • CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説

[編集] [1] キャピラリーシーケンスを行い、 解析に使うデータ(ファイル)を準備する

※ 詳細は、「 シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定」の [4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)を参照
  • キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
  • ゲノム編集した箇所をはさんだ領域をPCRで増幅したものを、両側のプライマー(センス、アンチセンス)でシークエンス解析したファイル
  • ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報
  • sgRNA配列の情報

[編集] [2] 「仮想実験室:Mitsucal」を用いてデータを解析する

  • 「仮想実験室:Mitsucal」のツール「波形分離(重なった波形を分離する)」を用いて解析を行う。
  1. 「仮想実験室:Mitsucal」のサイトへ移動 https://mitsucal.tsbio.info/vl/
  2. "やること"のプルダウンから「重なった波形を分離する」を選択
  3. "参照配列" に"遺伝子のもとの配列"をコピー&ペーストし、波形ファイル(拡張子.ab1)を送信して、「Start」
  • [A] 波形が途中から二重に重なっている場合:Bi-allelic(2個のアリルを検出)
  • [B] 波形が最後まで1種類の場合:ホモ(アリルは1個)


これ以降は編集途中の産物


ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合

個人用ツール
名前空間

変種
操作
案内
ツール