ゲノム編集した植物のシークエンスの解析

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'''(注意:編集中!)''' 
 
'''(注意:編集中!)''' 
 
* CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説
 
* CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説
 
::* ゲノム編集の概要・変異アリルの検出方法(genotyping)については、「 [[シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定]]」を参照
 
::* ゲノム編集の概要・変異アリルの検出方法(genotyping)については、「 [[シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定]]」を参照
  
====[1]キャピラリーシーケンスを行い、 解析に使うデータ(ファイル)を準備する====
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====[1] キャピラリーシーケンスを行い、 解析に使うデータ(ファイル)を準備する====
 
:::※ 詳細は、「 [[シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定]]」の '''[4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)'''を参照
 
:::※ 詳細は、「 [[シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定]]」の '''[4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)'''を参照
 
* キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
 
* キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
 
::* ゲノム編集した箇所をはさんだ領域をPCRで増幅したものを、両側のプライマー(センス、アンチセンス)でシークエンス解析したファイル
 
::* ゲノム編集した箇所をはさんだ領域をPCRで増幅したものを、両側のプライマー(センス、アンチセンス)でシークエンス解析したファイル
* ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報(sgRNA配列の位置がわかるもの)
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* ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報
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* sgRNA配列の情報
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====[2] 「仮想実験室:Mitsucal」を用いてデータを解析する====
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* 「仮想実験室:Mitsucal」のツール「波形分離(重なった波形を分離する)」を用いて解析を行う。
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::# 「仮想実験室:Mitsucal」のサイトへ移動 https://mitsucal.tsbio.info/vl/  <BR>
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::# "やること"のプルダウンから「重なった波形を分離する」を選択 <BR>
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::# "参照配列" に"遺伝子のもとの配列"をコピー&ペーストし、波形ファイル(拡張子.ab1)を送信して、「Start」
  
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* 「波形分離」ツールの使い方の解説は、鈴木研究室のホームページの記事を参照 http://biochemistry.isc.chubu.ac.jp/labo/suzuki/archives/812
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:* [A] 波形が途中から二重に重なっている場合:Bi-allelic(2個のアリルを検出)
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:* [B] 波形が最後まで1種類の場合:ホモ(アリルは1個)
  
==[1](概要)ゲノム編集で変異体を作成する手順:pKIベクターを用いた場合==
 
* 以下の説明は、pKIベクターの解説サイトの図に一部加筆したもの  https://www.jst.go.jp/pr/announce/20161117-2/index.html
 
:::(※ ガイドRNAの設計方法については、別記参照)
 
  
[[File:PKIベクターでのゲノム編集概要.png|700px]]
+
'''これ以降は編集途中の産物'''
  
:{| class="wikitable mw-collapsible mw-collapsed" data-expandtext="開く" data-collapsetext="閉じる"
 
!アグロバクテリウムの感染後、シークエンス解析に至るまでの流れ (概要説明)
 
|-
 
|1) 形質転換されたT1植物を選抜し、生育する
 
:* pKIベクターを用いた場合、T1種子の中から「OLE-tagRFPが光る」ものを播いて育てる (=T-DNAが組み込まれている)
 
|-
 
|2) 目的の遺伝子がゲノム編集されている個体を選抜・生育し、T2種子をとる<BR>
 
:* genotyping:PCR+制限酵素処理で、変異遺伝子を持つ個体を選抜 (制限酵素処理で、切れる:野生型(WT型)、切れない:変異型)
 
|-
 
|3) T2世代で、Cas9を持たない植物を選抜する
 
:* pKIベクターを用いた場合、T2種子の中から「OLE-tagRFPが光らない」ものを播いて育てる (=T-DNA、Cas9を持たない)
 
|-
 
|4) T2世代で、目的の遺伝子がゲノム編集されている個体を選抜する
 
:* 2) と同様のgenotypingを実施
 
|-
 
|5) キャピラリーシークエンサーでの解析
 
:* 4) のgenotypingの時のPCR産物(制限酵素処理する前のもの)を、キャピラリーシークエンサーで解析する
 
::* PCRに用いた両端のプライマー各々で解析したファイルを作成。このファイルを用いて以降の解析を行う
 
|-
 
|}
 
  
==[2] ゲノム編集によってできる変異型のアリルについて==
 
* CRISPR-Cas9によるゲノム編集では、PAM配列(NGG)の3塩基手前が切断される
 
* その切断個所を修復する際に、「挿入・欠失 (indel)」が生じて、フレームシフト等の変異型アリルができる
 
  
::* 以下は、ゲノム編集での変異アリルの例
 
:::[[File:ゲノム編集での変異アリルの例.png|700px]]
 
::* 挿入・欠失 (indel) は上記の例のように、数bpの場合もあれば、数十bp~100bp以上の場合もある
 
 
==[3] 変異型アリルの検出(遺伝子型の同定:genotyping)==
 
<table>
 
  <tr>
 
<td>
 
* ゲノム変種による変異の有無を検出できるように、制限酵素サイトの近傍にsgRNAを設計する (変異が生じると制限酵素サイトが無くなる)
 
:* sgRNAの配列と検出に用いた制限酵素の例、については上記[2]の図を参照
 
:* この例では、383bpのPCR産物をHaeIII処理すると、以下の長さの断片になる
 
::・(野生型)制限酵素(HaeIII)で切れる  -> 272bp, 111bp の2本の断片
 
::・(変異型)制限酵素(HaeIII)で切れない -> 約383bp の断片
 
:* 遺伝子型の同定を行う際の「DNA抽出、PCR、制限酵素処理」の手順については、「[[シロイヌナズナの遺伝子型の判定]]」を参照
 
</td>
 
<td>
 
[[File:PKIベクターでのゲノム編集概要.png|200px]]
 
</td>
 
</table>
 
 
==[4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)==
 
'''(1) キャピラリーシークエンスを行う'''
 
:* [3]で用いたPCR産物(制限酵素処理"前"のもの)を用いて、シークエンス解析を行う
 
:* キャピラリーシークエンスの方法は、「[[BigDye Terminaterを使ったシークエンス]]」を参照
 
:::* シークエンス反応時に使うプライマーは、[3]のPCRで使用した両側のプライマー
 
:::::=PCR産物1個につき、シークエンスは2サンプル、となる (両側のプライマー=センス、アンチセンスの2種類で読むため
 
:::* 1反応 (計10ul) あたりに、PCR産物を "1ul" 使用する 
 
::::(プライマーダイマーがある場合は、精製・定量したうえで、プロトコール通りの量を使用 (精製方法:[[NucleoSpin Gel and PCR Clean-upを使ったDNA精製]])
 
 
'''(2) 解析に使うデータ(ファイル)を準備する'''
 
:* キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1) ※上記(1)で得られたデータ
 
:* ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報(sgRNA配列の位置がわかるもの)
 
 
'''(3) シークエンスデータを解読して配列を決定し、アリルを同定する'''
 
:* シークエンスデータの解読方法については、「[[]]」を参照
 
*
 
*
 
 
[[ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合]]
 
[[ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合]]

2022年1月13日 (木) 14:14時点における最新版

(注意:編集中!) 

  • CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説

[編集] [1] キャピラリーシーケンスを行い、 解析に使うデータ(ファイル)を準備する

※ 詳細は、「 シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定」の [4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)を参照
  • キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
  • ゲノム編集した箇所をはさんだ領域をPCRで増幅したものを、両側のプライマー(センス、アンチセンス)でシークエンス解析したファイル
  • ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報
  • sgRNA配列の情報

[編集] [2] 「仮想実験室:Mitsucal」を用いてデータを解析する

  • 「仮想実験室:Mitsucal」のツール「波形分離(重なった波形を分離する)」を用いて解析を行う。
  1. 「仮想実験室:Mitsucal」のサイトへ移動 https://mitsucal.tsbio.info/vl/
  2. "やること"のプルダウンから「重なった波形を分離する」を選択
  3. "参照配列" に"遺伝子のもとの配列"をコピー&ペーストし、波形ファイル(拡張子.ab1)を送信して、「Start」
  • [A] 波形が途中から二重に重なっている場合:Bi-allelic(2個のアリルを検出)
  • [B] 波形が最後まで1種類の場合:ホモ(アリルは1個)


これ以降は編集途中の産物


ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合

個人用ツール
名前空間

変種
操作
案内
ツール