ゲノム編集した植物のシークエンスの解析

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* CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説
 
* CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説
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* 「波形分離」ツールの使い方の解説は、鈴木研究室のホームページの記事を参照 http://biochemistry.isc.chubu.ac.jp/labo/suzuki/archives/812
 
* 「波形分離」ツールの使い方の解説は、鈴木研究室のホームページの記事を参照 http://biochemistry.isc.chubu.ac.jp/labo/suzuki/archives/812
 
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:* [A] 波形が途中から二重に重なっている場合:Bi-allelic(2個のアリルを検出)
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:* [B] 波形が最後まで1種類の場合:ホモ(アリルは1個)
  
  
 
'''これ以降は編集途中の産物'''
 
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!アグロバクテリウムの感染後、シークエンス解析に至るまでの流れ (概要説明)
 
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|1) 形質転換されたT1植物を選抜し、生育する
 
:* pKIベクターを用いた場合、T1種子の中から「OLE-tagRFPが光る」ものを播いて育てる (=T-DNAが組み込まれている)
 
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|2) 目的の遺伝子がゲノム編集されている個体を選抜・生育し、T2種子をとる<BR>
 
:* genotyping:PCR+制限酵素処理で、変異遺伝子を持つ個体を選抜 (制限酵素処理で、切れる:野生型(WT型)、切れない:変異型)
 
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|3) T2世代で、Cas9を持たない植物を選抜する
 
:* pKIベクターを用いた場合、T2種子の中から「OLE-tagRFPが光らない」ものを播いて育てる (=T-DNA、Cas9を持たない)
 
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|4) T2世代で、目的の遺伝子がゲノム編集されている個体を選抜する
 
:* 2) と同様のgenotypingを実施
 
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|5) キャピラリーシークエンサーでの解析
 
:* 4) のgenotypingの時のPCR産物(制限酵素処理する前のもの)を、キャピラリーシークエンサーで解析する
 
::* PCRに用いた両端のプライマー各々で解析したファイルを作成。このファイルを用いて以降の解析を行う
 
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[[ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合]]
 
[[ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合]]

2022年1月13日 (木) 14:14時点における最新版

(注意:編集中!) 

  • CRISPR-Cas9でゲノム編集した植物のシークエンスを解析し、変異アリルを同定する方法についての解説

[編集] [1] キャピラリーシーケンスを行い、 解析に使うデータ(ファイル)を準備する

※ 詳細は、「 シロイヌナズナのゲノム編集について:概要、変異アリルの検出・同定」の [4] 変異型アリルの同定(ゲノム編集した植物のシークエンス解析)を参照
  • キャピラリーシークエンサーで読んだ波形ファイル(拡張子.ab1)
  • ゲノム編集した箇所をはさんだ領域をPCRで増幅したものを、両側のプライマー(センス、アンチセンス)でシークエンス解析したファイル
  • ゲノム編集した「遺伝子のもとの配列」の情報
  • sgRNA配列の情報

[編集] [2] 「仮想実験室:Mitsucal」を用いてデータを解析する

  • 「仮想実験室:Mitsucal」のツール「波形分離(重なった波形を分離する)」を用いて解析を行う。
  1. 「仮想実験室:Mitsucal」のサイトへ移動 https://mitsucal.tsbio.info/vl/
  2. "やること"のプルダウンから「重なった波形を分離する」を選択
  3. "参照配列" に"遺伝子のもとの配列"をコピー&ペーストし、波形ファイル(拡張子.ab1)を送信して、「Start」
  • [A] 波形が途中から二重に重なっている場合:Bi-allelic(2個のアリルを検出)
  • [B] 波形が最後まで1種類の場合:ホモ(アリルは1個)


これ以降は編集途中の産物


ゲノム編集した植物のシークエンスの解析:シーケンスアセンブリソフトウェア「ATGC」を使う場合

個人用ツール
名前空間

変種
操作
案内
ツール