長いPCR産物のライブラリ作成

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(ページの作成:「== PCR産物の断片化== #PCR産物約10 µg/50 µlをCovarisのチューブにいれる。 # 以下の条件でCovaris S2で断片化する {| class='wikitabl...」)
 
 
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== PCR産物の断片化==
 
== PCR産物の断片化==
#PCR産物約10 µg/50 µlをCovarisのチューブにいれる。
+
#PCR産物約10 ng/50 µlをCovarisのチューブにいれる。
 
# 以下の条件でCovaris S2で断片化する
 
# 以下の条件でCovaris S2で断片化する
  
{| class='wikitable'
+
{| class='wikitable' style='margin-left: 3em'
 
|+ Covarisの設定
 
|+ Covarisの設定
 
|-
 
|-
| DNAの長さ(目標) || 350bp  
+
| DNAの長さ(目標)  
 +
| style="text-align:right;"| 350bp
 
|-
 
|-
| Duty Cycle || 10%
+
| Duty Cycle  
 +
| style="text-align:right;"| 10%
 
|-
 
|-
| Intensity || 5  
+
| Intensity  
 +
| style="text-align:right;"| 5  
 
|-
 
|-
| Cycles per Burst || 200
+
| Cycles per Burst  
 +
| style="text-align:right;"| 200
 
|-
 
|-
| Time (duration) ||  45
+
| Time (duration)  
 +
| style="text-align:right;"|  45
 
|-
 
|-
| Mode || Frequency sweeping
+
| Mode  
 +
| style="text-align:right;"| Frequency sweeping
 
|}
 
|}
# DNA溶液 46 µl を回収する。
 
  
# 37℃で30分間保温する。
+
== 末端の修復 End Repair ==
# 65℃で20分間保温する。
+
=== NEBNext End Repair Module を使用 ===
  
== Loop Adapterを結合 ==
+
* 以下のように試薬を混ぜる
 
+
== PCR産物のリン酸化==
+
#以下のように試薬を混ぜる
+
 
{|class='wikitable' style='margin-left: 3em'
 
{|class='wikitable' style='margin-left: 3em'
 
|-
 
|-
 
|PCR 産物
 
|PCR 産物
|style="text-align:right;"|8.5 µl
+
|style="text-align:right;"|44 µl
 
|-
 
|-
|T4 Polynucleotide Kinase
+
|NEBNext End Repair Reaction Buffer
|style="text-align:right;"|0.5 µl
+
|style="text-align:right;"|5 µl
 
|-
 
|-
|10x Buffer for T4 DNA Ligase
+
|NEBNext End Repair Enzyme Mix
|style="text-align:right;"|1µl
+
|style="text-align:right;"| 1 µl
|バッファーはDNA Ligaseのものを使用(ATPが入っている)
+
 
|}
 
|}
# 37℃で30分間保温する。
+
* 20℃で30分間保温する。
# 65℃で20分間保温する。
+
  
== Loop Adapterを結合 ==
+
== AMPureによる精製 ==
#以下のように試薬を混ぜる
+
# Sample Purification Beadsと水を以下のように混ぜる。
{|class='wikitable' style='margin-left: 3em'
+
## DNAの長さ350bpのとき、Sample Purification Beads 60 µl、水 40 µl
|-
+
# 希釈したSample Purification Beads 80 µlを加え、よく撹拌して、5分間室温で放置する。
|リン酸化PCR 産物
+
# 遠心後、磁性スタンドに立て、上清を'''回収'''する。
|style="text-align:right;"|5 µl
+
# Sample Purification Beads 15 µlを加え、よく撹拌して、5分間室温で放置する。
|-
+
# 遠心して上清を捨てる。
|1.5 µM Loop Adapter
+
# 200 µl 80%エタノールを加え、30秒後、上清を捨てる。スタンドから外して混ぜたりする必要はない。2回行う。
|style="text-align:right;"|0.5 µl
+
# 遠心して上清を捨てたあと、5分間乾燥させる。
|-
+
# 20 µl Resuspension Bufferを加え、懸濁する。2分室温で放置する。
|T4 DNA Ligase (NEB 2,000,000 unit/ml)
+
# 上清 17.5 µl を回収する。ここで止められる(-20℃)。
|style="text-align:right;"|0.5 µl
+
|}
+
# 20 ℃で15分間保温する。
+
# 70℃で10分間保温する。
+
# 0.5 µl USERを添加する。
+
# 37℃で15分間保温する。
+
  
== AMPureで精製 ==
 
# よく懸濁したAMPure XPをDNAと等量加える。よく混ぜたあと、室温で5分間静置する。
 
# 遠心してビーズを沈殿させたあと、磁性スタンドに立てて2分間静置する。
 
# スタンドに立てたまま上清を除く。
 
# 200µl 70% EtOHを加え、上清を除く。これを2回行う。
 
# 遠心してビーズを沈殿させ、磁性スタンドに立てる。そこにたまったEtOHを除く。
 
# 5分間蓋をあけたまま乾燥させる。
 
# 27.5 µl RSAを加えて、懸濁する。2分間待つ。遠心後磁性スタンドに立て、25 µl 上清を回収する。
 
# もう一度AMPureで精製する。25 µl 上清を回収する。
 
  
== PCR増幅 ==
+
== [[トマトSNPマーカーのライブラリ化]]のLoop Adapterを結合にすすむ ==
# 終濃度0.5µMになるようにUniversal PCR Primerと適当なIndex Primerを使って全量50µlでPCRを行う。
+
# AMPure 50µlを加えてDNAを精製する。RSB 30µlでDNAを回収する。
+

2020年10月21日 (水) 11:49時点における最新版

目次

[編集] PCR産物の断片化

  1. PCR産物約10 ng/50 µlをCovarisのチューブにいれる。
  2. 以下の条件でCovaris S2で断片化する
Covarisの設定
DNAの長さ(目標) 350bp
Duty Cycle 10%
Intensity 5
Cycles per Burst 200
Time (duration) 45
Mode Frequency sweeping

[編集] 末端の修復 End Repair

[編集] NEBNext End Repair Module を使用

  • 以下のように試薬を混ぜる
PCR 産物 44 µl
NEBNext End Repair Reaction Buffer 5 µl
NEBNext End Repair Enzyme Mix 1 µl
  • 20℃で30分間保温する。

[編集] AMPureによる精製

  1. Sample Purification Beadsと水を以下のように混ぜる。
    1. DNAの長さ350bpのとき、Sample Purification Beads 60 µl、水 40 µl
  2. 希釈したSample Purification Beads 80 µlを加え、よく撹拌して、5分間室温で放置する。
  3. 遠心後、磁性スタンドに立て、上清を回収する。
  4. Sample Purification Beads 15 µlを加え、よく撹拌して、5分間室温で放置する。
  5. 遠心して上清を捨てる。
  6. 200 µl 80%エタノールを加え、30秒後、上清を捨てる。スタンドから外して混ぜたりする必要はない。2回行う。
  7. 遠心して上清を捨てたあと、5分間乾燥させる。
  8. 20 µl Resuspension Bufferを加え、懸濁する。2分室温で放置する。
  9. 上清 17.5 µl を回収する。ここで止められる(-20℃)。


[編集] トマトSNPマーカーのライブラリ化のLoop Adapterを結合にすすむ

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